金叶榆适于工厂化繁殖的方法

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一种金叶榆适于工厂化繁殖的方法，采集金叶榆用于组织培养的当年生活体组织，并将采集到的活体组织进行清洗；利用清洁水浸泡清洗后的活体组织，然后将其切割细化；将细化后的活体组织利用酒精消毒，并进行表面灭菌，最后利用无菌蒸馏水冲洗干净备用；制备培养基，其为MS+6-BA0.5mg/L+IBA?0.1mg/L，将活体组织接种到培养基上进行培养；活体组织生根、长芽后接种到腐殖土移栽基质上。本发明在采集生物活体组织后，进行多道消毒操作，能够极大程度地降低生物组织在培养过程中的感染几率。另外，优化改良的培养基更能够提高金叶榆繁殖速度以及成活率。本发明适于工厂化操作生产，极大的满足了市场需求。

1.一种金叶榆适于工厂化繁殖的方法，其特征在于，步骤一、采集金叶榆用于组织培养的当年生活体组织，并将采集到的活体组织进行清洗；步骤二、利用清洁水浸泡清洗后的活体组织，然后将其切割细化；步骤三、将细化后的活体组织利用酒精消毒，并进行表面灭菌，最后利用无菌蒸馏水冲洗干净备用；步骤四、制备培养基，所述培养基为MS+6-BA0.5mg/L+IBA0.1mg/L，将活体组织接种到所述培养基上进行培养；步骤五、所述活体组织生根、长芽后接种到腐殖土移栽基质上；在所述步骤一至所述步骤四中，其培养条件为：培养温度23～26℃，光照时间12～14h/d，光照强度1800～2000lx。 2.根据权利要求1所述的金叶榆适于工厂化繁殖的方法，其特征在于，在所述步骤一中，采集金叶榆的当年生枝条作为活体组织，将获得活体组织在流水中冲洗20～30min，将外部泥土、菌类等冲洗掉；在所述步骤二中，切除所述活体组织上芽鳞外部多余的部分，然后用洗洁精水溶液将其浸泡20min，流水冲洗30min，切成2cm茎段；在所述步骤三中，在超净工作台上使用75％酒精消毒30s，再用0.1％氯化汞表面灭菌，灭菌时间为5-10min，将活体组织从氯化汞溶液中取出后采用无菌蒸馏水冲洗4～5次，每次1min。

技术领域

本发明涉及生物组织培养技术领域，更具体地说，特别涉及一种 金叶榆适于工厂化繁殖的方法。

背景技术

金叶榆属榆科榆属，系白榆变种，又名中华金叶榆，落叶乔木， 在干旱贫瘠条件下呈灌木状。金叶榆叶片呈金黄色，色泽艳丽，树冠 近圆形或卵圆形，树冠丰满，造型多样，3～4月开花，4～6月果熟。

金叶榆是寒冷、干旱及盐碱地区乔灌皆宜的优良彩叶植物新品种， 金叶榆具有生长迅速、枝条密集、耐修剪的优点，既可培育为黄色乔 木，作为园林风景树，又可培育成黄色灌木，广泛应用于绿篱色带造 型。金叶榆还具有很强的适应性，耐寒、抗旱、耐盐碱性较强，应用 金叶榆可以作为景观方面色彩的补充，完善绿色生态建设，在很多地 区实现红、黄、绿交相辉映的园林景色。

在现有技术中，由于金叶榆还未得到广泛推广，因此，其种植栽 培技术也没有得到相应的发展，依旧是采用传统方法利用手工栽培。

发明内容

(一)技术问题

人工栽培金叶榆具有繁殖效率低，感染风险系数高等问题，因此， 如何提高金叶榆的栽培技术使其适于工业化繁殖栽培，成为了本领域 技术人员亟待解决的问题。

(二)技术方案

本发明提供了一种金叶榆适于工厂化繁殖的方法，在该方法中， 具体包括步骤：

S1、获得当年生活体组织，采集金叶榆用于组织培养的当年生活 体组织，并将采集到的活体组织进行清洗；

S2、切割细化，利用清洁水浸泡清洗后的活体组织，然后将其切 割细化；

S3、消毒灭活，将细化后的活体组织利用酒精消毒，并进行表面 灭菌，最后利用无菌蒸馏水冲洗干净备用；

S4、制备培养基，制备培养基，所述培养基为MS+6-BA0.5mg/L+ IBA0.1mg/L，将活体组织接种到所述培养基上进行培养；

S5、移栽种植，所述活体组织生根、长芽后接种到腐殖土移栽基 质上；

其中，在所述步骤一至所述步骤四中，其培养条件为：培养温度 23～26℃，光照时间12～14h/d，光照强度1800～2000lx。

优选地：

在步骤S1中，采集金叶榆的当年生枝条作为活体组织，将获得活 体组织在流水中冲洗20～30min，将外部泥土、菌类等冲洗掉；

在步骤S2中，切除所述活体组织上芽鳞外部多余的部分，然后用 洗洁精水溶液将其浸泡20min，流水冲洗30min，切成2cm茎段；

在步骤S3中，在超净工作台上使用75％酒精消毒30s，再用0.1％氯 化汞表面灭菌，灭菌时间为5-10min，将活体组织从氯化汞溶液中取 出后采用无菌蒸馏水冲洗4～5次，每次1min。

(三)有益效果

在上述方案中：本发明在采集生物活体组织后，进行多道消毒操 作，能够极大程度地降低生物组织在培养过程中的感染几率。另外， 优化改良的培养基更能够提高金叶榆繁殖速度以及成活率。本发明适 于工厂化操作生产，极大的满足了市场需求。

附图说明

图1为本发明实施例中金叶榆适于工厂化繁殖的方法的流程图。

具体实施方式

下面结合附图和实施例对本发明的实施方式作进一步详细描述。 以下实施例用于说明本发明，但不能用来限制本发明的范围。

在本发明的描述中，除非另有说明，“多个”的含义是两个或两个 以上；术语“上”、“下”、“左”、“右”、“内”、“外”、“前端”、“后端”、 “头部”、“尾部”等指示的方位或位置关系为基于附图所示的方位或 位置关系，仅是为了便于描述本发明和简化描述，而不是指示或暗示 所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作， 因此不能理解为对本发明的限制。此外，术语“第一”、“第二”、“第 三”等仅用于描述目的，而不能理解为指示或暗示相对重要性。

在本发明的描述中，需要说明的是，除非另有明确的规定和限定， 术语“相连”、“连接”应做广义理解，例如，可以是固定连接，也可 以是可拆卸连接，或一体地连接；可以是机械连接，也可以是电连接； 可以是直接相连，也可以通过中间媒介间接相连。对于本领域的普通 技术人员而言，可以具体情况理解上述术语在本发明中的具体含义。

请参考图1，图1为本发明实施例中金叶榆适于工厂化繁殖的方法 的流程图。

本发明的目的为提供一种金叶榆适于工厂化繁殖的方法，从而为 实现工厂化育苗提供技术支撑。

为了实现上述目的，本发明提供了如下方案：

采集金叶榆的当年生枝条，枝条先在流水中冲洗20～30min，将 外部泥土、菌类等冲洗掉；用刀片切除芽鳞外部多余的部分，然后用 洗洁精水溶液浸泡20min，流水冲洗30min，切成2cm茎段；在超 净工作台上先用75％酒精消毒30s，再用0.1％氯化汞(HgCl2)表面灭菌， 灭菌时间为5-10min，从氯化汞溶液中取出后用无菌蒸馏水冲洗4～5 次，每次约1min；最后用经过灭菌后的无菌滤纸吸去活体组织表面的 水分，备用。在本发明中，活体组织的培养条件为：活体组织接种到 培养基中以后，将培养瓶摆放在培养室内培养架上培养，培养温度控 制在23～26℃，光照时间是12～14h/d，光照强度是1800～2000lx。

本发明的优点为：操作简单，极大程度地提升了金叶榆的繁殖速 度以及成活率，适于工厂化操作生产，极大的满足了市场需求。

实验对比：

制备对照组培养基：

诱导愈伤组织培养基：MS+6-BA1.0-5.0mg/L+IBA0.1-1.0mg/ L；

不定芽增植培养基：MS+6-BA1.0-5.0mg/L+IBA0.1-1.0mg/L；

不定根诱导培养基：1/2MS+IBA1.0-5.0mg/L；

制备实验组培养基：

培养基：MS+6-BA0.5mg/L+IBA0.1mg/L。

实施例1

实验组金叶榆树按照本发明的处理方式进行扩繁，对照组金叶榆 采用氯化汞消毒4min，然后选择本发明的诱导愈伤组织培养基、不定 芽增值培养基、不定根诱导培养基以及移栽基质上。在培养温度23～ 26℃，光照时间12～14h/d，光照强度1800～2000lx条件下进行培 养。

结果表明：选择本发明的消毒时间进行金叶榆组织消毒处理，可 以极大的减少金叶榆的污染几率，提升金叶榆的产量。

实施例2

实验组金叶榆按照本发明的处理方式进行扩繁，对照组金叶榆采 用本发明的消毒时间，然后选择诱导愈伤组织培养基MS+6-BA5.0mg/ L+IBA0.5mg/L，不定芽增植培养基MS+6-BA1.0mg/L+IBA0.1mg/ L不定根诱导培养基1/2MS+IBA0.5mg/L，移栽基质选用河沙。在 培养温度23～26℃，光照时间12～14h/d，光照强度1800～2000lx 条件下进行培养。

结果表明：实验组的培养基和移栽基质上金叶榆生长健壮，繁殖 量大，繁殖速度快，远远超过了对照组金叶榆的繁殖速度和生长状况。

本发明的实施例是为了示例和描述起见而给出的，而并不是无遗 漏的或者将本发明限于所公开的形式。很多修改和变化对于本领域的 普通技术人员而言是显而易见的。选择和描述实施例是为了更好说明 本发明的原理和实际应用，并且使本领域的普通技术人员能够理解本 发明从而设计适于特定用途的带有各种修改的各种实施例。

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